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您現(xiàn)在的位置: 醫(yī)學(xué)全在線 > 理論教學(xué) > 基礎(chǔ)學(xué)科 > 免疫細(xì)胞與核酸分子雜交 > 正文:樣品的前處理
    

蛋白質(zhì)及多肽激素放射免疫分析樣品的前處理

  樣品的正確收集與處理,是蛋白質(zhì)及多肽激素放射免疫分析取得成功的前提。不同的樣品與測(cè)定項(xiàng)目,其前處理有不同的要求。下面以神經(jīng)肽測(cè)定為例,介紹樣品的前處理方法。

  一、腦、脊髓與垂體中神經(jīng)肽的提。ㄒ源笫鬄槔)

  1.大鼠稱重后,在盡量安靜的情況下,迅速斷頭、取軀干血。

  2.盡快取下全腦、脊髓(某段)與垂體,在沸生理鹽水中煮5min,以滅活酶,保持神經(jīng)肽的穩(wěn)定。

  3.根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求分出腦區(qū)(如小腦、橋延腦、下丘腦、中腦或中央灰質(zhì)、丘腦、皮層、海馬、紋狀體等與垂體前葉。

  4.腦區(qū)等稱重。

  5.把腦區(qū)、垂體或脊髓,分別置于玻璃勻漿管內(nèi),加入1mol/l HAC(或HCl)1ml,充分勻漿后倒入塑料指形管中,在室溫下放置100min,使生物活性物質(zhì)充分溶解在酸中。

  6.加入1mol/l NaOH 1 ml,中和酸。

  7.離心,取上清。

  8.低溫(-20以下)保存待測(cè)。

  二、大鼠腦神經(jīng)核團(tuán)微穿孔取樣方法(以下丘腦為例)

  1.大鼠迅速斷頭,取出全腦,置沸生理鹽水中煮5min。

  2.將全腦置于取材角度器上,分別于視交叉前和乳頭體后用雙面刀片垂直切斷,取下丘腦塊。

  3.將雙面刀片裝在切片機(jī)上。

  4.將下丘腦置于切片機(jī)機(jī)載物臺(tái)上,腹側(cè)向下,并用502膠水固定。在腦塊后方適當(dāng)放置瓊脂塊以利固定。

  5.開動(dòng)振動(dòng)切片機(jī),緩慢移動(dòng)推進(jìn)器,切片厚400~500μm。用毛筆沾生理鹽水,小心收集切片置于平皿內(nèi)的生理鹽水中。

  6.將腦切片平置于橡皮板上,并在體視顯微鏡下,參照鼠腦立體定位圖譜,確定神經(jīng)核團(tuán)位置。

  7.選擇相應(yīng)直徑的穿孔器,分別于兩側(cè)核團(tuán)上垂直插下,然后推出針蕊將所取核團(tuán)組織放入勻漿器中。

  8.加入1mol/l HAC 0.5ml, 充分勻漿后倒入放免測(cè)定管中,放置100min。

  9.加入1mol/l NaOH 0.5ml中和酸,離心(3000rpm/min)20min,取上清液,低溫保存待測(cè)。

  三、內(nèi)臟、腫瘤組織中神經(jīng)肽的提。ㄒ晕刚衬槔)

 。1)取下胃粘膜后,迅速稱重置于試管,中沸蒸餾水1ml,在水浴中煮100min。標(biāo)本在室溫下放置,其中的生物活性物質(zhì)會(huì)被酶降解,所以要立即加熱處理。

  (2)冷卻后倒入特殊的勻漿器中,充分勻漿(使用電動(dòng)攪拌器)。勻漿液倒入塑料指形管中,再用蒸餾水1ml,沖洗勻漿器,并倒入上述管中。

 。3)離心,取上清,低溫保存待測(cè)。

  四、血漿

  1.直接測(cè)定

 。1)加酶抑制劑:準(zhǔn)確采全血若干毫升,注入預(yù)冷的加有①抗凝劑0.3mol/l EDTA·2Na(乙二胺四乙酸二鈉)溶液(每毫升全血20μl)、或1%肝素(每毫升全血10μl);②抑肽酶(每毫升全血500單位)的塑料指形管中,迅速低溫離心,取血漿低溫保存待測(cè)。

  抑肽酶有液體的(標(biāo)簽寫的有每毫升含多少單位)與固體的(每毫升含12TIU,1TIU=900KIU,即每毫克含10800單位)。固體的抑肽酶可用生理鹽水溶解,使之每20μl含500單位。

 。2)酸化處理:每毫升血漿加1mol/l HCl 0.2ml,低溫保存待測(cè)。測(cè)定前加1mol/l NaOH 0.2ml。

  以上兩種方法,任選一種即可。

  2.間接測(cè)定血標(biāo)本經(jīng)提取后,可去除蛋白質(zhì)等干擾因素,并使微量的生物活性肽濃縮,但較費(fèi)時(shí),成本也高。常用的提取方法有:

 。1)柱層析提取法:有多種層析柱可供提取不同的神經(jīng)肽,其中較為方便的是用Sep-pak C18層析柱提取。主要步驟步:

 、僦念A(yù)處理:該柱有兩頭,長(zhǎng)頭連接注射器,可注入溶液與樣品,短頭為排出口。預(yù)處理時(shí)注入乙腈10ml。蒸餾水20ml,使柱中的生物膠活化。

 、谧⑷霕悠罚ㄈ缪獫{、腦脊液、腹水、尿等):樣品中的水份流出,生物活性肽、蛋白及雜質(zhì)等吸附在生物膠上。血漿上柱前,如先去除蛋白,可增加柱子的使用時(shí)間。]

  ③淋洗:用4%HAC溶液100ml注入柱中,以洗去一些雜質(zhì)。

 、芟疵摚河7ml酸性乙腈(按容積算,每100ml中含有乙腈75ml、HAC4ml、蒸餾水21ml)作為洗脫劑,注入柱中,把生物活性肽洗脫下來,收集在塑料指形管中。

  ⑤清洗:用乙腈、蒸餾水清洗柱子,以備后用。

 、迣⑾疵撘捍蹈,低溫保存待測(cè)。測(cè)定時(shí)可加入一定量的緩沖液溶解。

  Sep-Pak C18柱層析,也可用于制備標(biāo)記抗原時(shí)的層析純化。

 。2)加膜藻土提取法:

  ①抽血:用一次性塑料注射器抽取受試者靜脈血4ml,置于加有肝素(125單位/ml 全血)指形管中。

 、诜蛛x血漿:在4下離心,取出血漿。

  ③血漿酸化:取2ml血漿,加入1mol/l HCl 0.5ml, 搖勻。

 、芪剑杭尤0.5%藻土懸液2ml,在水平震蕩器上震30min。離心,去上清,留沉淀。

  0.5%藻土縣液(Fuller’s earth)的配制:

  0.5g Fuller’s earth

  0.1g Dextran T70

  100ml去離子水

 、菹疵摚涸诔恋砉苤屑尤80%酸性丙酮1ml,在漩渦振蕩器上振2min,離心,取上清置于經(jīng)硅化的玻管中。

  80%酸性丙酮的配制:

  80ml丙酮

  20ml 1mol/L HCl

  ⑥去脂:加入石油醚1ml,搖勻,脂肪溶解在石油醚中,分層后吸去上層。

  ⑦干燥:下層液體,置于37℃水浴中,用氮?dú)猓ɑ蚩諝?吹干。

 、嗟蜏乇4娲郎y(cè)。測(cè)定時(shí)用一定量緩沖液溶解。

 。3)有機(jī)溶劑提取法:常用的有甲醇、乙醇、乙腈、丙酮等。將溶劑按一定比例,加入標(biāo)本內(nèi),混勻、振蕩、離心,取上清吹干,冷藏待測(cè)。通常在有機(jī)溶劑中加入適量的酸。

  在這些方法中,以柱層析法最穩(wěn)定、準(zhǔn)確,但成本高,推廣不易。加膜藻土法,提取率較高,但操作復(fù)雜、費(fèi)時(shí)。有機(jī)溶劑提取法操作方便,成本也低,雖穩(wěn)定性較差。

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